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如何在服务器上使用 Gemini 3 进行生信分析:从入门到进阶

——科研人的效率革命,从这一刻开始大模型已经帮助科研的每一个环节:文献管理、代码调试、实验设计、模型构建…… 但科研绘图

——科研人的效率革命,从这一刻开始

大模型已经帮助科研的每一个环节:文献管理、代码调试、实验设计、模型构建…… 但科研绘图依然是多数研究生头疼的环节之一:

MATLAB / Python 的语法太繁琐ggplot2 语法记不住论文级图形需要反复调试一个图可能要改几十遍

💡而现在,Gemini 3(Google 最新大模型)+ 服务器算力正在让科研绘图这件事变得轻松、高效、甚至准一键分析。

先产生作图代码,再调用程序跑

什么是 Gemini 3?

Gemini 3 是 Google 最新一代的通用人工智能大模型,也是当前最强的科研辅助模型之一。在以下核心能力上实现了质的飞跃:

更强的多模态理解能力(文本 + 图像 + 数据)

Gemini 3 可以同时理解论文、图像、表格、代码、实验数据,因此特别适合科研—它能像研究生一样读图、读文献、理解实验流程、解释图像结构和推导逻辑。

极强的长上下文能力(百万级 Token)

可一次输入整份论文集、整个项目的代码仓库、上万条数据文件,而不需要拆分上传。

强大的代码生成能力(Python / R / MATLAB / Bash)

Gemini 3 能生成直接可运行的科研代码,而且 debug 能力非常强,适合生信工作流:RNA-seq → ChIP-seq → ATAC-seq → WGS → 统计建模 → 可视化

支持持续对话式科研

你可以像带一个助理一样不断提出修改要求,它会自动优化脚本、调整绘图参数、修复报错、补全分析流程。

更高的科学推理能力

面对数学、信号处理、统计学、生物学机制推理问题,Gemini 3 的链式推理能力更准确、逻辑性更强,能够做严格的科研解释与模型搭建。

Gemini 3 对生信领域有什么益处?成倍提升分析速度

Gemini 3 能极大减少重复性操作,适用于:

ChIP-seq / ATAC-seq / RNA-seq 全流程脚本自动生成自动写 Snakemake / Nextflow pipeline自动 QC 报告生成(FastQC、MultiQC)自动找 bug,自动补齐缺失步骤

你只需一句话:

帮我用 deepTools 画一个 H3K27ac peak 的热图。

它就能接管整个过程。

科研绘图达到 SCI 级别

Gemini 3 能准确分析矩阵数据、样本分组、基因注释,自动生成标准的 SCI 图:(逻辑是先生成绘图代码,再运行代码生成图片)

火山图、热图UMAP/t-SNE/PCAGO/KEGG 富集气泡图ChIP-seq peaks 位置分布图bulk RNA-seq 基因表达趋势图motif 分析结果示意图省大量人力成本

传统生信分析往往需要:

⏳ 解决报错 ⏳ 修改 R 脚本 ⏳ 调整图形 ⏳ 反复阅读参数文档 ⏳ 在服务器找文件路径

Gemini 3 会自动完成这些工作,让你把时间专注在科学问题本身

结合服务器算力直接跑大数据

Gemini 3 + 服务器环境可以做到:

直接从服务器目录读取 10GB~TB 级数据自动并行加速自动把 Python/R 代码推上 GPU/CPU自动保存高分辨率图(PDF/SVG/PNG)

适用于:

单细胞 10X 大矩阵数百样本 bulk RNA-seq大规模组学数据分子动力学模拟结果ATAC-seq / ChIP-seq 轨迹图和 bigWig 文件分析为什么要在服务器上使用 Gemini 3 做分析?

Image

与在本地电脑运行相比,把 Gemini 3 部署到服务器上,你能获得:

1.更强算力,轻松处理大规模数据

服务器的 CPU/GPU 能力远超本地笔电,适合:

大样本队列单细胞、多组学大矩阵大型材料模拟数据高质量论文级绘图自动生成

你只需要一句话:

帮我画出差异基因火山图,SCI 风格。Gemini 3 可以自动:

读取服务器文件分析数据生成 Python 或 matplotlib 或 R代码自动调色、字号、线宽、标注保存矢量图(PDF/SVG)

3.模型长对话能力强,可连续优化图形

你可以不断调整:

标签再小一点

去掉网格线,增加字体

标注不同的marker

Gemini 3 会自动更新代码,无需你手动 debug。

环境准备:如何在服务器上启用 Gemini 3

这一部分详情参考:

https://mp.weixin.qq.com/s/aqBQ95MHCxCYid9j_fkjCg

用 Gemini 3 生成 SCI 级别绘图的全过程演示

以下展示真实科研场景:绘制差异基因火山图。

Step 1:你上传需求 + 数据路径

例如你告诉 Gemini:

当前目录下05.DE是差异分析的结果,帮我根据这个数据画一个sci级别的火山图

Step 2:Gemini 自动生成分析代码

下面是 Gemini 3 会自动写出的高质量可运行代码:

importpandasaspdimportnumpyasnpimportmatplotlib.pyplotaspltimportseabornassnsdefplot_sci_volcano(file_path, output_name='volcano_plot'):# 1. 读取数据try:df = pd.read_csv(file_path, sep='\t')exceptFileNotFoundError:print(f"错误:找不到文件{file_path}")return# 2. 检查列名col_map = {'logfc':'log2FoldChange','padj':'padj','gene':'gene_id'}# 简单的列名自动匹配尝试forcolindf.columns:if'log'incol.lower()and'fc'incol.lower(): col_map['logfc'] = colif'adj'incol.lower()or'fdr'incol.lower(): col_map['padj'] = colif'gene'incol.lower()or'symbol'incol.lower(): col_map['gene'] = colprint(f"检测到的列名映射:{col_map}")# 3. 设置阈值pval_threshold =0.05logfc_threshold =1.0# 4. 数据预处理# 处理可能的 0 值导致的 infinite log 值df[col_map['padj']] = df[col_map['padj']].replace(0,1e-300)# Replace 0 with a very small numberdf['nlog10'] = -np.log10(df[col_map['padj']])# 分组标记df['Group'] ='NS'df.loc[(df[col_map['padj']] < pval_threshold) & (df[col_map['logfc']] > logfc_threshold),'Group'] ='Up'df.loc[(df[col_map['padj']] < pval_threshold) & (df[col_map['logfc']] < -logfc_threshold),'Group'] ='Down'# 5. 绘图设置 (SCI 风格)plt.figure(figsize=(8,6), dpi=300)sns.set_style("ticks")plt.rcParams['font.family'] ='sans-serif'colors = {'NS':'#bdbdbd','Up':'#E64B35','Down':'#3C5488'}sns.scatterplot(data=df, x=col_map['logfc'], y='nlog10',hue='Group', palette=colors,style='Group', markers={'Up':'o','Down':'o','NS':'o'},edgecolor='none', alpha=0.8, s=20, legend='full')# 6. 添加辅助线plt.axhline(-np.log10(pval_threshold), color='black', linestyle='--', linewidth=0.8, alpha=0.7)plt.axvline(logfc_threshold, color='black', linestyle='--', linewidth=0.8, alpha=0.7)plt.axvline(-logfc_threshold, color='black', linestyle='--', linewidth=0.8, alpha=0.7)# 7. 坐标轴和标签plt.title('Volcano Plot', fontsize=14, fontweight='bold')plt.xlabel(r'$log_{2}(Fold Change)$', fontsize=12)plt.ylabel(r'$-log_{10}(P_{adj})$', fontsize=12)sns.despine()# 8. 标注 Top 基因ifcol_map['gene']indf.columns:top_genes = pd.concat([df[df['Group'] =='Up'].nlargest(5,'nlog10'),df[df['Group'] =='Down'].nlargest(5,'nlog10')])texts = []for_, rowintop_genes.iterrows():texts.append(plt.text(row[col_map['logfc']], row['nlog10'], row[col_map['gene']], fontsize=8))try:fromadjustTextimportadjust_textadjust_text(texts, arrowprops=dict(arrowstyle='-', color='black', lw=0.5))exceptImportError:print("提示: 未安装 adjustText 库,基因标签可能会重叠。建议 pip install adjustText")exceptExceptionase:print(f"标注调整时发生错误:{e}")# 9. 保存图片plt.tight_layout()plt.savefig(f'{output_name}.png', dpi=300, bbox_inches='tight')plt.savefig(f'{output_name}.pdf', dpi=300, bbox_inches='tight')print(f"绘图完成!已保存为{output_name}.png 和{output_name}.pdf")if__name__ =="__main__":plot_sci_volcano('05.DE/de_result.tsv')

换成R语言绘图

下面是gemini给出的代码和运行的结果

# 加载必要的库if(!require("ggplot2")) install.packages("ggplot2", repos="http://cran.us.r-project.org")if(!require("ggrepel")) install.packages("ggrepel", repos="http://cran.us.r-project.org")if(!require("dplyr")) install.packages("dplyr", repos="http://cran.us.r-project.org")library(ggplot2)library(ggrepel)library(dplyr)# 1. 读取数据file_path <-"05.DE/de_result.tsv"data <- read.table(file_path, header=TRUE, sep="\t", stringsAsFactors=FALSE)# 2. 设置阈值pval_threshold <- 0.05logfc_threshold <- 1.0# 3. 数据处理# 填充 NA 和处理 0 值data$padj[is.na(data$padj)] <- 1min_nonzero <- min(data$padj[data$padj> 0], na.rm=TRUE)if(is.infinite(min_nonzero)) min_nonzero <- 1e-300data$padj[data$padj== 0] <- min_nonzero / 10data$nlog10<- -log10(data$padj)# 分组data$Group<-"NS"data$Group[data$padj< pval_threshold & data$log2FoldChange> logfc_threshold] <-"Up"data$Group[data$padj< pval_threshold & data$log2FoldChange< -logfc_threshold] <-"Down"data$Group<- factor(data$Group, levels=c("Up","Down","NS"))# 计算上下调基因数量,用于显示count_up <- sum(data$Group=="Up")count_down <- sum(data$Group=="Down")# 4. 筛选 Top 基因 (增加筛选逻辑:结合 logFC 和 pvalue 的重要性)# 定义一个 "重要性分数" = logFC绝对值 * -log10(pvalue)data$importance<- abs(data$log2FoldChange) * data$nlog10top_genes <- data %>%filter(Group !="NS") %>%arrange(desc(importance)) %>%slice_head(n = 10)# 取前 10 个最"重要"的基因# 5. 高级风格设置 (Nature Publishing Group 风格配色 + 现代排版)# 手动定义 NPG 风格颜色color_palette <- c("Up"="#E64B35",# 朱红"Down"="#00A087",# 青绿 (Teal)"NS"="#d9d9d9")# 极浅灰,降低干扰# 动态设置坐标轴范围,保证对称美观max_x <- max(abs(data$log2FoldChange), na.rm=TRUE)limit_x <- ceiling(max_x) + 1p <- ggplot(data, aes(x=log2FoldChange, y=nlog10)) +# A. 主散点层# 使用 shape=21 (带边框的圆点),可以让点看起来更精致# size 映射到显著性 (nlog10),越显著点越大,增加层次感geom_point(aes(fill=Group, size=nlog10),color="white",# 点的边框颜色为白色stroke=0.2,# 边框极细shape=21,# 填充型圆点alpha=0.85) +# 轻微透明# B. 颜色与大小映射设置scale_fill_manual(values=color_palette) +scale_size_continuous(range = c(1.5, 4.5), guide ="none") +# 限制点的大小范围,并不显示大小图例# C. 辅助线 (更优雅的浅灰色)geom_vline(xintercept=c(-logfc_threshold, logfc_threshold), linetype="longdash", color="#7f7f7f", alpha=0.5, size=0.4) +geom_hline(yintercept=-log10(pval_threshold), linetype="longdash", color="#7f7f7f", alpha=0.5, size=0.4) +# D. 统计信息注释 (直接标在图上,不需要看图例数数)annotate("text", x = -limit_x * 0.8, y = max(data$nlog10) * 0.95,label = paste0("Down-regulated\nn = ", count_down),color = color_palette["Down"], fontface ="bold", size = 5, hjust=0) +annotate("text", x = limit_x * 0.8, y = max(data$nlog10) * 0.95,label = paste0("Up-regulated\nn = ", count_up),color = color_palette["Up"], fontface ="bold", size = 5, hjust=1) +# E. 坐标轴与排版labs(title="Differential Expression Analysis",subtitle=paste0("Total genes: ", nrow(data)," | Cutoff: p<0.05, |logFC|>1"),x=expression(log[2]("Fold Change")),y=expression(-log[10]("P-adjusted"))) +xlim(-limit_x, limit_x) +# 强制对称 X 轴theme_minimal(base_size = 14) +# 使用极简主题为基础theme(plot.title = element_text(hjust = 0.5, face ="bold", size = 18),plot.subtitle = element_text(hjust = 0.5, color ="grey40", size = 10, margin = margin(b = 20)),panel.grid.major = element_line(color ="grey92", size = 0.5),# 极淡的网格panel.grid.minor = element_blank(),axis.line = element_line(color ="black", size = 0.5),# 坐标轴线axis.text = element_text(color ="black"),legend.position ="none"# 隐藏图例 (因为图上已经标了 Up/Down 文字)) +# F. 基因标签 (使用 geom_label_repel 带背景框,更清晰)geom_label_repel(data=top_genes, aes(label=gene_id, color=Group),fill="white",# 标签背景色fontface="bold",size=3,box.padding=0.5,point.padding=0.5,min.segment.length=0,# 总是显示连接线segment.color="grey50",segment.size=0.5,max.overlaps=Inf,show.legend=FALSE) +scale_color_manual(values=color_palette)# 标签文字颜色跟随点的颜色# 6. 保存ggsave("volcano_plot_chic.png", plot=p, width=8, height=7, dpi=300)ggsave("volcano_plot_chic.pdf", plot=p, width=8, height=7)print("高级风格绘图完成!已保存为 volcano_plot_chic.png")

Gemini 3 最适合生成哪些科研图?物信息学PCA / UMAP / t-SNE火山图、热图ChIP-seq / ATAC-seq peak 分布图RNA-seq 差异基因分析图统计模型回归曲线随机森林特征重要性ROC / PR 曲线写在最后

未来的大模型(包括 Gemini 3)会做到:

⭐ 你只需要一句话

生成适用于《Nature》投稿的图,格式按照Nature标准。

大模型会自动:

读取原始数据分析绘图标注排版输出 PDF/AI 矢量图生成图注 + 说明

科研绘图不再是瓶颈,而是:

🔥最高效、最轻松的环节之一。